in deze studie tonen we verdere vooruitgang en toepassingsmogelijkheden van een kleinschalige continue teeltsysteem, eerder ontwikkeld door Klein et al. , voor een grotere mate van parallellisatie en een betere behandeling en controle van de afzonderlijke reactoren. De belangrijkste aspecten van de wijzigingen in het systeem zijn een verhoging van het aantal parallelle kweekvaten van 8 tot 24 reactoren en een vermindering van het werkvolume van 10 tot 6,5 mL. Het huidige systeem bestaat verder uit op maat gemaakte deksels met vier vaste poorten die worden gebruikt voor beluchting, toevoer van media, verwijdering van bouillon en inenting of bemonstering (Fig. 1). Naast de vier poorten wordt een optische staafvormige do-sonde door het deksel geplaatst voor Do-monitoring zonder het kweekproces te verstoren, en op deze manier de zuurstof fluorescerende sensorspot van de vorige opstelling te vervangen . Het waterbad, dat in de vorige opstelling een constante kweektemperatuur handhaafde, werd vervangen door een op maat gemaakt aluminium verwarmingsblok, dat aan een microplaatroerder wordt gesmolten. Aangezien de vorige versie van het kleinschalige bioreactor systeem werd gevalideerd met behulp van de splijtingsgist Schizosaccharomyces pombe , presenteren we hier de verbeterde kweek set-up voor S. cerevisiae cultivaties.
De belangrijkste operationele stappen, alsmede de aanpassing van de verdunningssnelheden door de juiste buisdiameter en pompsnelheid van de mediuminfluxpomp te kiezen, werden uitgevoerd zoals eerder beschreven . Hier werd het gewicht van het vloeistofgehalte van elke bioreactor gravimetrisch bepaald aan het einde van de kweek, zodat de respectieve verdunningssnelheid met a 5 nauwkeurig kon worden berekend.1% afwijking. Kweekbouillon en de reactorgasfase werden beide via dezelfde poort van het reactordeksel verwijderd met behulp van de effluxpomp (Fig. 1). Voor alle kweekexperimenten werden effluxpompen van 7,5 mL min−1 gebruikt. De effluxpomp was veel hoger dan de toevoerpomp, waardoor een lichte negatieve druk in het kweekvat ontstond. Dit drukverschil resulteerde in de instroom van lucht door de beluchtingspoort. De gemiddelde zuurstofmassa overdracht coëfficiënt kLa bereikt was 110 h-1, waardoor DO niveaus ruim boven 30% verzadiging tijdens het kweekproces. De pH werd niet online gecontroleerd en ook niet gecontroleerd tijdens de kweek, omdat het medium a priori werd aangepast aan een pH van 6,0, wat resulteerde in een uiteindelijke pH van 5,5 in de kweekbouillon. De pH werd dagelijks aan de lijn gemeten vanaf de uitstroom van de reactoren en na de oogst. De pH bleef constant zodra de steady-state werd bereikt en het effluent van de reactor vertoonde een geringe afwijking van 0,1 pH-eenheden (gegevens niet getoond).
om de maximale specifieke groeisnelheid (µmax) te bepalen, werd S. cerevisiae ST938 gekweekt onder batchomstandigheden waarbij overmatige beschikbaarheid van nutriënten werd toegepast. Met behulp van glucose als koolstofbron, de µmax was 0,265 h-1, de biomassa opbrengst was 24,9 g mol−1, en de 3-PK koolstof opbrengst op glucose was 0,6% C-mol (Tabel 1). In deze teeltwijze werd het grootste deel van de koolstof omgezet in ethanol en CO2, als hoge glycolytische fluxen in wild – type S. cerevisiae zijn sterk verbonden met alcoholische fermentatie . De chemostatculturen worden gecontroleerd door de toevoer van een groeibeperkend substraat. Bij steady-state produceert wild-type S. cerevisiae geen significante hoeveelheden overloopmetabolieten onder een bepaalde groeisnelheid, wat de kritische verdunningssnelheid (Dcrit (h−1)) markeert vanwege het gebrek aan accumulatie van koolstofbron. Bij of boven deze kritische verdunningssnelheid accumuleert de koolstofbron zich in de reactor en wordt het overloopmetabolisme geactiveerd, wat resulteert in de productie van verschillende bijproducten, zoals ethanol, acetaat en kleine hoeveelheden organische zuren . Dienovereenkomstig werden continue culturen gebruikt om de relatie tussen de groeisnelheid en biomassaspecifieke 3-PK productvorming in S. cerevisiae ST938 te onderzoeken. De vier verschillende verdunningen D (h−1): 0,04, 0,09, 0,17 en 0,21 werden gekozen om onder de µmax van S. cerevisiae stam ST938 te liggen, bepaald in batchkweek. De biomassa opbrengst op glucose evenals de 3-PK opbrengst, specifieke 3-PK productiesnelheid, en de specifieke substraat opname snelheid werden onderzocht (Fig. 2a-d, Tabel 1). Alle relevante teeltparameters, d.w.z. opbrengsten en percentages met de respectieve standaardafwijkingen, zijn samengevat in Tabel 1.