i denne studien viser vi ytterligere fremskritt og anvendelsesmuligheter for et småskala kontinuerlig kultiveringssystem, tidligere utviklet av Klein et al. , for økt grad av parallellisering og forbedret håndtering samt overvåking av de enkelte reaktorene. De viktigste aspektene ved endringene i systemet omfatter en økning i settet av parallelle kulturfartøy fra 8 til 24 reaktorer og en reduksjon i arbeidsvolum fra 10 til 6,5 mL. Det nåværende systemet består videre av skreddersydde lokkhus fire faste porter som brukes til lufting, medieforsyning, buljongfjerning samt inokulering eller prøvetaking (Fig. 1). I tillegg til de fire portene settes en optisk stangformet do-sonde inn gjennom lokket for DO-overvåking uten å forstyrre dyrkingsprosessen, og på denne måten erstatte oksygen fluorescerende sensorpunkt fra forrige oppsett . Vannbadet, som i det forrige oppsettet opprettholdt en konstant dyrkningstemperatur, ble erstattet av en skreddersydd aluminiumsvarmeblokk, som er smeltet sammen med en mikroplate omrører. Som den forrige versjonen av småskala bioreaktor systemet ble validert ved hjelp av fisjon gjær Schizosaccharomyces pombe, presenterer vi her forbedret dyrking set-up For S. cerevisiae dyrking.
Grunnleggende operasjonelle trinn, samt justeringer av fortynningshastigheter ved å velge riktig rørdiameter og pumpehastighet for medieinnstrømningspumpen, ble utført som tidligere beskrevet . Her ble vekten av væskeinnholdet i hver bioreaktor bestemt gravimetrisk ved slutten av dyrkingen, slik at den nøyaktige beregningen av den respektive fortynningshastigheten med en 5.1% avvik. Kulturbuljong og reaktorgassfasen ble begge fjernet gjennom samme port av reaktorlokket ved hjelp av effluxpumpen (Fig. 1). Efflukspumpehastigheter på 7,5 mL min-1 ble brukt til alle dyrkningsforsøk. Efflukspumpehastigheten var langt over matepumpehastigheten, og genererte et lite negativt trykk inne i kulturbeholderen. Denne trykkforskjellen resulterte i tilførsel av luft gjennom lufteporten. Den gjennomsnittlige oksygenmasseoverføringskoeffisienten kLa oppnådde var 110 h-1, som tillot DO-nivåer godt over 30% metning gjennom hele dyrkingsprosessen. PH ble ikke overvåket online eller kontrollert under dyrking, da mediet ble a priori justert til en pH på 6,0, noe som resulterte i en endelig pH på 5,5 i dyrkningsbuljongen. PH ble målt på linje på daglig basis fra utløpet av reaktorene og etter høsting. PH forble konstant så snart steady-state ble oppnådd, og reaktoravløpet viste et mindre avvik på 0,1 pH-enheter (data ikke vist).
Utforsking av 3-HK-produksjon i småskala kjemostater ved forskjellige fortynningshastigheter under C-begrensende forhold
For å bestemme den maksimale spesifikke vekstraten (µ) ble s. cerevisiae ST938 dyrket i batchbetingelser som anvendte overflødig næringstilgjengelighet. Ved bruk av glukose som karbonkilde var µ 0,265 h−1, biomasseutbytte var 24,9 g mol-1, og 3-HK karbonutbytte på glukose var 0,6% C-mol (Tabell 1). I denne kultiveringsmodusen ble det meste av karbonet metabolisert til etanol og CO2, som høye glykolytiske flukser i villtype S. cerevisiae er sterkt knyttet til alkoholholdig gjæring . Kjemostatkultiveringer styres av tilførsel av et vekstbegrensende substrat. Ved steady state produserer ikke villtype s. cerevisiae betydelige mengder overløpsmetabolitter under en viss vekstrate, noe som markerer den kritiske fortynningshastigheten (Dcrit (h−1)) på grunn av manglende akkumulering av karbonkilde. Ved eller over denne kritiske fortynningshastigheten akkumuleres karbonkilden i reaktoren og overløpsmetabolismen utløses, noe som resulterer i produksjon av forskjellige biprodukter, som etanol, acetat og mindre mengder organiske syrer . Følgelig ble kontinuerlige kulturer brukt til å undersøke forholdet mellom vekstraten og biomassespesifikk 3-HP produktdannelse I s. cerevisiae ST938. De fire forskjellige fortynningsratene D (h−1): 0.04, 0.09, 0.17 og 0.21 ble valgt til å være under s. cerevisiae-stammen ST938 bestemt i batchkultivering. Biomasseutbyttet på glukose samt 3-HP-utbyttet, spesifikk 3-HP-produksjonshastighet og den spesifikke substratopptakshastigheten ble undersøkt (Fig. 2a-d, Tabell 1). Alle relevante dyrkingsparametere, dvs. utbytter og rater med de respektive standardavvikene, er oppsummert I Tabell 1.