Etablering Av Cellesuspensjonskultur Av Gulrot (Daucus carota) – Plantecelleteknologi | din partner i plantevevskultur

Gulrot (Daucus carota) er en vinter krydret toårig plante som vokser for sin spiselige taproot. Det er en av de mest konsumerte og produserte grønnsaker på grunn av sin diettvariasjon i farge, smak, fiber og vitamin A, samt forbruket i både rå og kokte former. Mer enn 20 millioner tonn av det produseres hvert år til konsum.

Vevskulturpraksis har vært svært populær i kloning av planter. Den første studien av gulrotvevskultur ble rapportert i 1939 Av Gautheret Og Nobecourt. Imidlertid Steward et al. Og Reinert rapporterte den første studien av «gulrotembryogenese» ; de prøvde å vokse røttene ved hjelp av cellesuspensjon og callus kulturer.somatisk embryogenese er en effektiv metode for å forstå og undersøke de biokjemiske, fysiologiske og genetiske aspektene av plantecellekultur.

Mange studier på gulrotvevskulturen førte til utviklingen av en enkel metode for embryogenese i gulrøtter. Ifølge metoden kan veksten av gulrotkulturer induseres ved bare å fjerne hormonet 2,4-D fra cellesuspensjonskulturer. Nå brukes gulrot ofte som en eksperimentell modell for analyse av somatisk embryogenese i ulike laboratorier over hele verden.

Materiale Og Utstyr Som Kreves for Etablering Av Kulturen

Steriliserte Materialer

  • 5 Sprø callus kultur av gulrot, forurenset, og opprettholdes ved 25 ℃.
  • 5 erlenmeyer-kolber (250 ml), inneholdende kulturmedium med 5 x 10-8 g / ml 2, 4-D.
  • 5 målesylindere (100 ml) med foliehetter.
  • 2 spatler.
  • 25 ark aluminiumsfolie (100 x 100 mm).
  • 2 stykker nylon, eller rustfritt stål sikter med en porøsitet på 250 µ, som kan settes inn i åpningen av målesylindrene.
  • 5 petri-retter.

Ikke-steriliserte materialer

  • Vanntett merking penn
  • Roterende risting maskin
  • Bunsen brenner
  • 1 Erlenmeyer kolbe (150 ml) som inneholder 95% etanol
  • Parafilm

popup_newsletter

prosedyre for initiering og etablering av kulturen

  1. ta rørene av callus kultur, steril munnen av alle 5 rør og overfør callus til petriskålen separat (5 calli I 5 Petriskål).
  2. Ta en 250 ml kanonisk kolbe som inneholder kulturmediet og 2, 4-D.
  3. Overfør alle 5 calli fra Petriskålen til 5 kanoniske kolber, separat.
  4. Flamme / steril munnen på kolberne og dekk dem med hetten. Fest hetten med parafilm.
  5. Plasser alle kolber som inneholder kulturen på den roterende ristemaskinen i mørk eller lav lysintensitet ved 25 ℃.
  6. etter 7 dager, overfør kolber fra shakeren til et sterilt rom.
  7. Fjern parafilmen og foliehetten fra hver kolbe og flammer / steriliser flaskenes munn.
  8. Overfør suspensjonen av hver kolbe til en steril 100 ml sylinder separat ved å passere den gjennom en sigte.
  9. La innholdet avgjøre i 10 minutter og kast deretter supernatanten.
  10. Overfør rester av celler igjen i målesylinderen til en 250 ml kolbe som inneholder 60 ml ferskt medium.
  11. Gjenta trinn 10 for hver kulturkolbe.
  12. Sett alle de fem kolber på shakeren igjen.
  13. etter 7 dager gjenta prosedyren du har gjort før (fra trinn 6-10). Men denne gangen tar bare 1 / 5th av de resterende cellene som inokulumet.
  14. Gjenta prosedyren omtrent 3-4 ganger. Ved å gjøre det, vil bare enkeltceller eller små aggregater forbli i gulrotfjæringen.
  15. for gulrotcellesuspensjon varierer antallet passende celler mellom 105 og 3 x 105 celler/ml eller 100 og 300 mg (ferskvekt) inokulum i et volum på 60 ml ferskt medium som inneholder medier og 5×10-8 g/ml, 2,4-D.
  16. en overføringsperiode på 7 dager er passende for at gulroten skal få enkeltceller i suspensjonskulturen.

Approximate Schedule of the Culture

Event Timing (approximate)
Initiation of cell suspension and determination of total cell number and PCV (packed cell volume) Day 0
First transfer of cultures Day 8
Fourth transfer of cultures Day 29

Result

What should you observe while experimenting? Her er noen poeng å huske mens du noterer resultatene dine.

  • dato Og varighet av eksperimentet.
  • antall kulturer og behandlinger som brukes.
  • Registrer morfologi og antall infiserte kulturer med et intervall på tre uker.
  • Bestem PCV (pakket cellevolum) i begynnelsen og slutten av overføringen av kulturen.
  • Estimerer det totale celletallet etter 3 subkulturer, på dag 1, 2, 4 og 7, og plotter en graf mot tiden.
  • Studer forholdet mellom tettheten av inokulum og vekstmønsteret.suspensjonskulturen gir en fordel over andre kulturer, da det tillater bevegelse av vevet i kulturmediene som letter gassformig utveksling. Videre fjerner det enhver polaritet av vev og næringsgradient i og på media.

    Anvendelse Av Vevskultur For Gulrot

    1. for å klone taproots.
    2. for å studere mutantformen av gulrøtter.
    3. å studere de fysiologiske responsene til gulroten som kan lette forståelsen av andre planter også.
    4. for å studere veksten og utviklingen av gulrot fra en enkeltcelle.
    5. å studere stressresponsen til gulroten som gir et innblikk i svarene til andre planter også.
    6. å generere hundrevis av transgene planter fra suspensjonen av enkeltceller for eksperimentelle formål.
    1. Reinert j. Og Yeoman M. M. (1982). Plantecelle-Og Vevskultur: en laboratoriehåndbok. Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, New York.
    2. Hardegger M., Shakya R. (2004) Transformasjon Av Gulrot. I: Curtis I. S. (eds) Transgene Avlinger Av Verden. Springer, Dordrecht. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-2333-0_22.
    3. Vekst Og deling av gulrotceller i suspensjonskultur. (1970). Plante-Og Cellefysiologi. DOI: 10.1093 / oxfordjournals.pcp.a074564.
    4. https://www.atzlabs.com/prodcut-info/C1955-Carrot-…

    Anjali Har DU NOEN PCT-historie å dele?
    Vi vil gjerne høre din tilbakemelding og forslag!
    Utvalgte PCT produkt historier vil bli omtalt på vår hjemmeside også. For ikke å glemme, kan noen godbiter finne en vei til ditt hjem sammen med den.
    Del dine forslag & historie med meg på [email protected]

Legg igjen en kommentar

Din e-postadresse vil ikke bli publisert.