L’espressione selettiva del recettore IL-7 sulle cellule T della memoria identifica la generazione precoce dipendente da CD40L di sottoinsiemi distinti di cellule T della memoria CD8+

Risultati

Identificazione della catena α del recettore IL-7 (CD127) come marker per le cellule T della memoria. Durante la ricerca di nuovi marcatori per definire effettori e sottoinsiemi di cellule T di memoria nel mouse, abbiamo analizzato l’espressione superficiale del recettore IL-7 α-chain / CD127 (Fig. 1 bis). Durante le risposte primarie alla Lm, si possono distinguere distinte sottopopolazioni di popolazioni di cellule T spleniche antigene-specifiche in base ai livelli di espressione di CD127. Le cellule a bassa espressione CD127 (CD127low) predominano durante la fase effettrice acuta. Durante la transizione nella fase delle cellule T di memoria, tuttavia, le cellule CD127low scompaiono gradualmente, mentre le popolazioni che esprimono livelli elevati (CD127high) rimangono notevolmente stabili nel tempo (Fig. 1 a e c). Questi valori cinetici distinti suggeriscono fortemente che l’espressione CD127 è una caratteristica selettiva per le cellule T a memoria lunga. Durante la fase effettuatrice, le cellule T CD127low CD8 + migrano preferenzialmente verso organi non linfoidi, mentre solo le cellule T CD127high CD8 + vengono rilevate in LN (Fig. 1 ter). La milza rappresenta un “organo intermedio” in cui tutte le diverse sottopopolazioni si trovano presto dopo l’immunizzazione (22, 23). Successivamente durante la fase di memoria, le cellule T antigene-specifiche in tutti gli organi sono caratterizzate da un fenotipo CD127alto (Fig. 1 b e c). Il confronto delle capacità delle cellule T specifiche dell’antigene CD127low e CD127high di proliferare in risposta alla stimolazione ha rivelato notevoli differenze tra i due sottoinsiemi. Come mostrato in Fig. 1d, le cellule T CD127high specifiche della Listeria purificate proliferano rapidamente dopo la stimolazione anti-CD3, mentre le cellule T CD127low proliferano male. È improbabile che queste differenze nella proliferazione riflettano un vantaggio delle cellule CD127-positive attraverso la stimolazione di IL-7R mediata da Ab, poiché diversi cloni di MAB con attività nota di attivazione o blocco di CD127 hanno dimostrato lo stesso effetto in saggi di stimolazione in vitro a breve termine (dati non mostrati).

iv xmlns:xhtml=”http://www.w3.org/1999/xhtml Fig. 1.

CD127 (IL-7R) espressione di superficie come marcatore per celle T di memoria. (a) Una coorte di topi BALB/c è stata infettata da una dose subletale (≈0,1 × LD50) di Lm WT, seguita da un’infezione secondaria (≈10 × LD50) 5 settimane dopo. Per i punti di tempo indicati durante le risposte primarie (superiori) e di richiamo (inferiori), vengono mostrati grafici puntiformi rappresentativi di splenociti (gated su cellule T CD8+ live) colorati con tetrameri H2-Kd/ LLO91–99 (asse y) e per l’espressione di superficie CD127 (asse x). (b) I linfociti provenienti da diversi organi sono stati isolati durante le fasi effettore primario (7 giorni dopo l’infezione) e memoria (35 giorni dopo l’infezione). Istogrammi rappresentativi sono gated su cellule tetramer-positive CD8+ e H2–Kd/ LLO91-99 e mostrano CD127 colorazione (aperto) e controlli non colorati (riempito). (c) Cinetica dei numeri assoluti(asse y) delle cellule tetramer-positive CD8+ e H2-Kd/LLO91-99 di CD127 ad alta (pieno) e bassa (aperto) espressione; sei singoli topi per punto di tempo. (d) Le cellule multimer – positive CD127 ad alta e bassa espressione CD8+, H2-Kd/LLO91-99 sono state ordinate direttamente ex vivo 10 giorni dopo l’infezione da Listeria. Proliferazione di carbossi fluoresceina succinimidil cellule etichettate con estere è stato analizzato dopo la stimolazione anti-CD3; CD127high (linea grassetto) o CD127low (linea sottile) cellule.

Per dimostrare più direttamente che le cellule T a memoria lunga sono presenti esclusivamente nel compartimento ad alta espressione CD127 presto dopo l’adescamento in vivo, abbiamo eseguito studi di trasferimento adottivo utilizzando una tecnica di colorazione multimer reversibile MHC recentemente sviluppata (21) per isolare funzionalmente le cellule T specifiche dell’antigene direttamente ex vivo. Dopo il trasferimento adottivo di cellule T specifiche CD127high LLO91-99 da topi infettati per 10 giorni con Lm, le cellule trasferite erano ancora rilevabili diverse settimane dopo nella milza di topi riceventi ingenui (Fig. 2a), mentre i numeri di cella dopo il trasferimento delle cellule CD127low erano al limite di rilevamento. Questa osservazione non era dovuta a differenze di migrazione in vivo di cellule CD127 elevate e CD127 basse trasferite, perché abbiamo trovato differenze simili per il polmone (Fig. 2a ) e altri organi (LN e fegato, dati non mostrati). Per sostenere ulteriormente l’interpretazione che le cellule T CD127high mantengono esclusivamente cellule di memoria antigene-specifiche, i topi riceventi sono stati sfidati dopo il trasferimento adottivo con infezione da Listeria. Ancora una volta, solo nei topi che avevano ricevuto cellule T CD127high prima dell’infezione era rapida espansione delle cellule T LLO91–99-specifici trasferiti rilevabili (Fig. 2 ter). Ancora una volta, questo risultato non era dovuto a differenze nella migrazione perché il mantenimento o l’espansione delle cellule T CD127low trasferite non era rilevabile in nessun altro organo (Fig. 2b e dati non mostrati). Sebbene questi risultati degli studi di trasferimento adottivo sostengano fortemente l’ipotesi che le cellule T a memoria lunga siano presenti esclusivamente nel compartimento delle cellule T CD127high, abbiamo anche osservato limitazioni sostanziali di questo approccio sperimentale. In particolare, le cellule T di memoria con funzione effettuatrice immediata sembrano essere abbastanza sensibili agli esperimenti di trasferimento adottivo e muoiono rapidamente dopo la purificazione e l’applicazione endovenosa; sebbene sopravvivano per mesi o anni se rimangono intatte in vivo (11). Pertanto, sebbene i nostri risultati dal trasferimento adottivo siano conformi all’interpretazione che CD127 è un marker per le cellule T a memoria lunga, non possiamo escludere che anche i problemi intrinseci relativi alla sopravvivenza di distinte sottopopolazioni di cellule T contribuiscano al risultato di questi esperimenti.

Fig. 2.

Studi di trasferimento adottivo indicano che le cellule T a memoria lunga sono presenti esclusivamente nel compartimento CD127-positivo. CD127 alta e bassa espressione CD8+, H2–Kd / LLO91-99 cellule multimer-positive da BALB / c Thy1.i topi 1 sono stati ordinati direttamente ex vivo 10 giorni dopo l’infezione da Listeria. Le cellule sono state trasferite in topi naive BALB / c (Thy1.2)-riceventi, e 3 settimane dopo spleens e polmoni sono stati colorati per le cellule donatrici (CD8+ e Thy1.1+). (a) I grafici a barre riassumono i dati per i numeri assoluti di cellule Thy1.1+ per organo dopo il trasferimento di cellule CD127high (aperte) o CD127low (riempite) cellule T. (b) Stessa acquisizione e presentazione dei dati come descritto in a, 5 giorni dopo l’infezione con 103 Lm.

Il costo delle popolazioni di cellule T antigene-specifiche con CD127 e CD62L consente la discriminazione tra le sottopopolazioni di cellule T di memoria. Un’ulteriore caratterizzazione della popolazione di cellule T CD127high ha mostrato che può essere suddivisa in sottopopolazioni che esprimono livelli alti e bassi di CD62L (Fig. 3). L’analisi funzionale diretta ex vivo (21) delle cellule T purificate (10-12 giorni dopo l’infezione, quando tutte le sottopopolazioni sono simultaneamente rilevabili nella milza) ha scoperto ulteriori differenze funzionali. Mentre i sottoinsiemi di cellule T CD62Llow mostrano un’attività citolitica ex vivo vigorosa e immediata, le cellule T CD127high/ CD62Lhigh dimostrano una lisi molto scarsa delle cellule bersaglio rivestite di peptidi (Fig. 3). La colorazione intracellulare delle citochine delle sottopopolazioni ordinate ha rivelato che le cellule T CD127high/CD62Llow, come il sottoinsieme CD127low/CD62Llow, producono le citochine effettrici INF-γ e il fattore di necrosi tumorale α; al contrario, il sottoinsieme CD127high/CD62Lhigh produce IL-2 ma non IFN-γ e il fattore di necrosi tumorale α. Pertanto, la combinazione marker di CD127 e CD62L consente l’identificazione di sottopopolazioni di cellule T con caratteristiche molto simili a quelle descritte in precedenza nell’uomo. Le cellule T CD127low/ CD62Llow dimostrano tutte le caratteristiche note di una popolazione di cellule T effettori reali (TE, scarsa attività proliferativa, limitata sopravvivenza in vivo e funzione effettore immediata). Il sottoinsieme CD127high / CD62Lhigh corrisponde alle caratteristiche di TCM, e il CD127high / Cd62low celle T misura la descrizione di TEM.

Fig. 3.

La doppia colorazione CD127/CD62L distingue tra sottoinsiemi distinti di cellule T CD8+; risultati simili possono essere trovati negli esseri umani. Doppia colorazione di CD8+, H2–Kd/LLO91-99 cellule multimer-positive per l’espressione superficiale di CD62L (asse y) e CD127 (asse x) dopo l’infezione con Lm; sono indicate percentuali relative di sottopopolazioni nei quadranti. Le sottopopolazioni CD127low/CD62Llow, CD127high/CD62Llow e CD127high/CD62Lhigh sono state ordinate direttamente ex vivo 12 giorni dopo l’infezione da Listeria e trasferite in diversi test funzionali. L’attività citolitica è stata valutata dopo incubazione di cellule ordinate in presenza di cellule bersaglio e peptide LLO91–99 (quadrati) o nessun peptide (cerchi). Colorazione delle citochine intracellulari di ex vivo ordinati LLO91–99-specifiche sottopopolazioni (come indicato sopra) è stata eseguita per IL-2 (in Alto), IFN-γ (al Centro), e il fattore di necrosi tumorale α (in Basso) dopo breve in vitro restimolazione con LLO91–99 peptide (aree nere; le aree bianche rappresentano sia i controlli); le percentuali di citochine cellule positive sono indicati.

La generazione di distinte sottopopolazioni di cellule T a memoria dipende dall’aiuto delle cellule T mediato da CD40L. Poiché abbiamo ritenuto che potrebbe essere problematico basare esclusivamente l’interpretazione che l’espressione CD127 può essere utilizzata come marker per distinguere tra cellule T effettore e memoria longeva su esperimenti di trasferimento cellulare adottivo, abbiamo deciso di analizzare le linee mutanti del mouse con difetti nella generazione di memoria delle cellule T. Se CD127 è davvero un marcatore di cellule T di memoria “precoce”, dovremmo essere in grado di identificare le differenze durante i punti di tempo precoce e tardivo all’interno dei sottoinsiemi CD127-positivi nei topi con difetti di memoria.

Poiché studi recenti hanno dimostrato l’importanza dell’aiuto delle cellule T per la generazione di risposte di memoria di lunga durata (2-4), abbiamo deciso di determinare se la presenza o l’assenza di aiuto delle cellule T CD4+ durante l’adescamento delle cellule T CD8+ porta a differenze nelle composizioni del sottoinsieme di cellule T antigene-specifiche rilevate I topi MHC II-carenti, che mancano di cellule T CD4 + convenzionali, hanno una risposta di memoria CD8+ difettosa e la qualità della protezione diminuisce nel tempo (2-4). La colorazione per le sottopopolazioni delle cellule T 10 giorni dopo l’infezione primaria ha rivelato che il sottoinsieme CD127high/CD62Llow è quasi completamente assente nei topi MHC II–/– (Fig. 4a); le altre sottopopolazioni sono presenti a frequenze simili a quelle dei topi WT C57BL/6. Questi dati dimostrano che l’assenza di aiuto delle cellule T impedisce la generazione efficiente di un sottoinsieme di cellule T con un fenotipo di memoria effettore, che sembra essere cruciale per una rapida espansione in vivo e la funzione effettore.

Fig. 4.

Le risposte compromesse della memoria nei topi MHC II–/– e CD40L–/– sono correlate a difetti precoci nella generazione di sottoinsiemi distinti di cellule T. (a) I topi WT C57BL/6 (a sinistra) e MHC II-carenti (a destra) sono stati infettati con una dose subletale di Lm che esprime l’ovoalbumina; vengono mostrati grafici dot di cellule T CD8+, H2-Kb/SIINFEKL-positive macchiate per CD62L (asse y) e CD127 (asse x) 10 giorni dopo l’infezione primaria. (b) Numero di batteri vitali nella milza 3 giorni dopo la reinfezione (≈10 × LD50; 5 wk dopo l’infezione primaria) con Listeria in CD40L–/– (riempito) e WT BALB/c (aperto); n = 3 per gruppo. (c) Cinetica delle cellule T specifiche di LLO91–99 determinate dalla colorazione del tetramero H2-Kd/LLO91-99 in topi CD40L–/– (•) o WT BALB/c ( □ ) dopo infezione primaria (0,1 × LD50) e richiamo (2,5 × LD50; 5 wk dopo infezione primaria) con Lm; tre topi per punto temporale. (d) I topi BALB/c WT e i topi CD40L–/– hanno ricevuto BrdUrd bevendo acqua durante l’infezione da richiamo con Lm (2,5 × LD50; 5 wk dopo l’infezione primaria) durante l’intera fase di espansione (giorni 1-5); i grafici a punti mostrano l’incorporazione di BrdUrd (asse x) in cellule CD8+ T macchiate con tetrameri H2-Kd/LLO91–99 (asse (e) Doppia colorazione di cellule tetramer-positive CD8+, H2–Kd/ LLO91-99 da un mouse CD40L–/– BALB/c per CD62L (asse y) e CD127 (asse x) 10 giorni dopo l’infezione primaria (controllo WT BALB/c vedere Fig. 2 quater). f) Numero assoluto di sottoinsiemi di cellule T tetramer–positive LLO91-99 nella milza determinato 10 giorni dopo l’infezione primaria mediante colorazione per CD62L e CD127.

Poiché importanti meccanismi di aiuto delle cellule T CD4+ sono mediati attraverso l’interazione di CD40 e CD40L (24-26), abbiamo studiato se i topi CD40L– / – mostrano un fenotipo simile a quello dei topi MHC II–/–. In accordo con altri studi recenti (27), i topi CD40L–/– non dimostrano differenze nella carica batterica o nella clearance batterica dopo l’infezione primaria da Listeria (dati non mostrati) e hanno normali risposte primarie delle cellule CD8+ T a una dose subletale di Lm (Fig. 4 quater). Tuttavia, la loro capacità di eliminare rapidamente la reinfezione con una dose più elevata di Lm (≈10 × LD50) è ridotta (Fig. 4b), in correlazione con le risposte compromesse delle cellule T della memoria CD8+ (Fig. 4c ) e un sottoinsieme CD127high/CD62Llow molto ridotto (Fig. 4 e ed f) durante la prima fase post-operatoria. Durante la reinfezione con Listeria, la proliferazione delle cellule T rispondenti nei topi CD40L–/– è equivalente a quella delle popolazioni cellulari nei topi WT, indicando che il fenotipo non è dovuto a un difetto generale nella capacità proliferativa delle cellule T di memoria (Fig. 4d) ma piuttosto a un numero ridotto di cellule T di memoria in grado di rispondere immediatamente all’antigene reencounter. Questo fenotipo è stato dimostrato da esperimenti di etichettatura in vivo in cui BrdUrd è stato incorporato durante l’intera fase di espansione (Fig. 4d ) e da studi in vivo BRDURD pulse–chase che monitorano la perdita di etichetta sulla proliferazione (dati non mostrati).

La generazione ridotta di sottoinsiemi di cellule T con un fenotipo di memoria effettore all’inizio dopo l’innesco viene trasmessa nel pool di cellule T di memoria tardiva. I nostri dati mostrano che in assenza di cellule T CD4+ o CD40L, il sottoinsieme di cellule T CD127high/CD62Llow viene significativamente ridotto presto dopo l’adescamento. Inoltre, noi (Fig. 4b) e altri (3-5) hanno dimostrato che l’aiuto alterato delle cellule T durante l’adescamento delle cellule T porta a cambiamenti nella qualità dell’immunità protettiva verso la reinfezione con Lm o il virus della coriomeningite linfocitica. Per collegare più chiaramente il difetto osservato nella prima generazione di cellule T CD127high / CD62Llow con la qualità della successiva memoria delle cellule T in questi topi, abbiamo analizzato le popolazioni di cellule T specifiche dell’antigene durante la fase di memoria (5 wk dopo l’infezione primaria da Listeria) in modo più dettagliato. A questo punto, l’analisi delle cellule T antigene-specifiche deve essere eseguita su cellule derivate da diversi tessuti a causa del loro comportamento migratorio distinto. Oltre alla milza, abbiamo scelto LN come tessuto rappresentativo per gli organi linfoidi e il polmone come tipico compartimento periferico non linfoide. In questo momento, le cellule T specifiche dell’antigene in questi organi sono quasi tutte CD127high (Fig. 1b); le cellule nel polmone sono CD62Llow (dati non mostrati), mentre la maggior parte delle cellule T di memoria antigene-specifiche nel LN sono CD62Lhigh (Fig. 5 ter). Per determinare il numero di cellule T a memoria antigene-specifica con chiara funzione effettrice immediata nei diversi organi, abbiamo eseguito la colorazione intracellulare delle citochine per IFN-γ. Come mostrato in Fig. 5a, i topi CD40L–/– sono caratterizzati da un numero sostanzialmente diminuito di cellule T di memoria antigene-specifiche con funzione effettore immediata rispetto ai topi WT. Questo risultato è vero sul livello delle frequenze (percentuale) all’interno del compartimento delle cellule T CD8+ e in numeri assoluti (Fig. 5 bis). Tuttavia, la colorazione del tetramero MHC dei linfociti derivati da LN (Fig. 5b) ha rivelato un numero quasi identico di cellule T antigene-specifiche con un fenotipo CD62Lhigh. Alcune cellule T specifiche dell’antigene CD62Llow sono rilevabili anche in LNs di topi WT, in correlazione con le frequenze delle cellule produttrici di IFN-γ (Fig. 5 bis). Questa popolazione è fondamentalmente assente in LNs di topi CD40L–/–; l’intero sottoinsieme CD8+/ CD62Llow è ridotto nei topi CD40L–/ -, suggerendo un difetto generale nella generazione di questo sottoinsieme di cellule T. In sintesi, i nostri dati mostrano che l’assenza di CD40L-dipendente CD4+ aiuto delle cellule T durante il periodo di priming si traduce in differenze quantitative nelle sottopopolazioni di cellule T CD8+ antigene-specifici, con un numero notevolmente ridotto di cellule che presentano un fenotipo di memoria effettore (CD127high/CD62Llow). Queste differenze quantitative nelle cellule con funzione effettore precoce immediata vengono trasmesse nella fase di memoria e influenzano la qualità dell’immunità protettiva.

Fig. 5.

I cambiamenti dipendenti da CD40L nei sottoinsiemi delle cellule T all’inizio dopo il priming delle cellule T vengono trasmessi nel successivo pool di cellule T di memoria. (a) I linfociti sono stati isolati da polmoni, spleen e LN derivati da WT BALB/c topi o CD40L–/– 35 giorni dopo l’infezione primaria con Lm (0,1 × LD50). La colorazione intracellulare IFN-γ è stata eseguita dopo una breve restimolazione in vitro in presenza di peptide LLO91–99 per identificare le cellule T con funzione effettrice immediata. I grafici a punti mostrano risultati rappresentativi per diversi organi( come indicato); i numeri indicano le frequenze complessive delle cellule che producono IFN-γ. La prima fila di grafici a barre riassume i dati per le frequenze di IFN-γ-producing, LLO91–99-specific T cells all’interno del compartimento CD8+; la fila di grafici a barre a destra riassume i dati per i numeri assoluti di IFN-γ-producing, LLO91–99-specific T cells in diversi organi . (b) Le cellule LN sono state prelevate 35 giorni dopo l’infezione primaria come descritto in a; Le cellule T specifiche di LLO91–99 sono state rilevate mediante colorazione multimer MHC (dot plot, asse y) insieme alla costaining per l’espressione della superficie CD8 e CD62L (dot plot, asse x). I grafici a punti rappresentativi sono mostrati per le celle gated su celle CD8 + T; le frequenze all’interno di ogni quadrante sono indicate. Il grafico a barre a sinistra riassume i dati per le frequenze delle cellule T MHCS multimer – e CD62L-positive all’interno del compartimento CD8+; la riga del grafico a barre a destra riassume i dati per i numeri assoluti di cellule T multimer–positive LLO91-99/H2-Kd in LN (CD40L – / – (riempito) e WT BALB/c (aperto); n = 3 per gruppo).

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