alkuperäiset paperit
Staphylococcus aureuksen aiheuttama Keskuslaskimokatetriin liittyvä verenkiertoinfektio: mikrobiologia ja riskitekijät
Geraldo SadoymaI; Augusto Diogo FilhoII; Paulo Pinto Gontijo FilhoI, II
mikrobiologian Ilaboratorio
Iiccih Uberlândian liittovaltion sairaalan kliinisestä sairaalasta; Uberlância MG, Brasilia
kirjeenvaihtopiste
Abstrakti
vaikka Keski-verisuonikatetrit (CVC) ovat välttämättömiä nykylääketieteessä, ne ovat tärkeä riskitekijä primaarisissa bakteremioissa. Tutkimme Staphylococcus aureuksen aiheuttaman katetriin liittyvän verenkiertoinfektion (CR-BSI) esiintyvyyttä ja riskitekijöitä leikkauspotilailla. Prospektiivinen tutkimus tehtiin Hospital das Clínicas da Universidade Federal de Uberlândiassa (HC-UFU) syyskuusta 2000 joulukuuhun 2002. Ihon kiinnityskohta, katetrin kärki ja veri analysoitiin mikrobiologisesti. Kunkin potilaan väestötiedot ja riskitekijät kirjattiin ylös, ja viljelmät tunnistettiin fenotyyppisesti. Yleisin taudinaiheuttaja oli Staphylococcus aureus, jonka ilmaantuvuus oli 4, 9 CR-basis-jaksoa 1 000 katetria / vrk kohti. Logistisen regression perusteella riippumattomat riskitekijät olivat: kolonisaatio insertiokohdassa =200 pesäkettä muodostavaa yksikköä (PMY)/20 cm2 (p=0, 03; odds ratio (OR) =6, 89) ja katetrin kärki (P=0, 01; OR=7, 95). CR-BSI-luku oli korkea; se liittyi pääasiassa S: ään. aureus ja ihon kolonisaatio insertiokohdassa ja katetrin kärjessä olivat tärkeitä CR-BSI: n riskitekijöitä.
avainsanat: Staphylococcus aureus, ventraalinen laskimokatetri, verenkiertoinfektio.
turvallinen verisuoniyhteys on yksi nykyaikaisen lääketieteellisen käytännön avaintekijöistä; luotettavan saatavuuden varmistamiseen tarvittavat suonensisäiset laitteet liittyvät kuitenkin merkittävästi iatrogeeniseen sairauteen, erityisesti bakteremiaan ja kandidemiaan . Yhdysvalloissa esiintyy vuosittain yli 250 000 IVDs: n esiintymiseen liittyvää verivirtainfektiota (BSI)., jonka mukaan kuolleisuus on 12-25%; BSIs myös laajentaa sairaalan internointi, lisäkustannukset US$33,000-35,000 / potilas . Laskimotukoksissa keskushermostokatetrien (CVCs) käyttöä seuraa usein sekä paikallisia että systeemisiä komplikaatioita, mukaan lukien septinen tromboflebiitti, endokardiitti, metastaattiset infektiot ja bakteremiat .
on arvioitu, että yli 80% kaikista katetriin liittyvistä verenkiertoinfektioista (CR-basis) liittyy CVC: hen, vaikka niiden osuus kaikista verisuonikatetreista on vain pieni. CR-tase-erät aiheuttavat merkittävää sairastuvuutta ja kuolleisuutta, ja ne lisäävät internointiaikaa ja-kustannuksia .
CR-BSI: n patogeneesi on monitekijäinen ja monimutkainen. Vaikka laskimoiden ja valtimoiden katetrit voivat kolonisoitua verenkierron kautta infektioista muissa paikoissa, kautta suoliston translokaatio tai antamalla nesteitä (luontainen kontaminaatio), käytettävissä olevat tiedot viittaavat siihen, että useimmat stafylokokit-infektiot johtuvat näiden mikro-organismien siirtymisestä ihon sisäänottokohdasta tai katetrin keskiöstä .
”US National Nosocomial Infections Surveillance System Report”-raportin mukaan vuosina 1991-1999 yleisimmät CR-BSI etiologiaan liittyvät patogeenit olivat: koagulaasinegatiivinen Staphylococcus (CoNSs) (37%), S. aureus (13%), Enterococcus spp. (13%) ja Candida albicans (8%).
arvioimme primaarisen S. aureus bacteremias-bakteerin patogeneesiä leikkauspotilailla, jotka olivat läpikäyneet keskuslaskimokatetroinnin, ja tutkimme heidän riskitekijöitään.
aineisto ja menetelmät
tutkimuksen suunnittelu. Havainnoiva prospektiivinen tutkimus toteutettiin aktiivisella, spontaaniin sairaalakysyntään perustuvalla hakujärjestelmällä Uberlândian yliopistollisen sairaalan (HC-UFU) kliinisellä kirurgisella osastolla II. Jokaisesta potilaasta kirjattiin väestötiedot sekä sisäiset ja ulkoiset riskitekijät.
mikrobiologiset tekniikat
CVC-insertiokohta. Iholta otettiin näyte CVC: n injektiokohdasta. Kaksi näytettä otettiin: ensimmäinen, kun katetri asetettiin paikoilleen ja toinen 5-7 päivää sen jälkeen. Noin 20 cm2 katetrin kiinnityskohdassa olevaa ihoa puhdistettiin steriileillä ennalta kostutetuilla pyyhkäisynäytteillä. Moppi laitettiin 1 mL: n putkeen, jossa oli PBS + 0, 1% natriumtiosulfaattia, joka kiihtyi pyörteellä, ja noin 0, 1 mL nestettä inokuloitiin veren agar-ja mannitolisuolalevyille. Ihoviljelmiä pidettiin positiivisina aina, kun >200 UFC: tä eristettiin .
CVC-kärki. Katetrit poistettiin steriileissä olosuhteissa. Katetrien kärjet leikattiin steriileillä saksilla ja kuljetettiin laboratorioon putkissa, joissa oli 10 mL fosfaattipuskuroitua suolaliuosta (PBS) + 0, 1% Tween 80. Katetrin kärkiviljelmät tutkittiin kvantitatiivisesti käyttäen muunneltua Brun-Buisson-tekniikkaa; noin 5 cm: n pätkä katetrin kärjestä laitettiin putkeen, jossa oli 10 mL PBS: ää + 0, 1% Tween 80: tä, ja sitä ravisteltiin pyörteessä 1 minuutin ajan; 0.1 mL nestettä inokuloitiin agar-vereen, McConkey-agariin ja mannitolisuola-agar-levyihin ja inkuboitiin 37ºC: ssa 24 tunnin ajan pesäkettä muodostavien yksiköiden lukumäärän määrittämiseksi. Viljelmiä pidettiin positiivisina ,kun> 102 PMY/mL havaittiin.
Hemokulttuurit. Verinäytteet saatiin ääreislaskimopunktion kautta. Hemokultaatiot tehtiin inokuloimalla 5-10 mL verta kaupallisen automatisoidun Bactec/Alert® – järjestelmän (Vitek System, Organon Teknika Corp.) pulloon. Macconkey agarissa ja blood agarissa viljeltiin positiivisia viljelypulloja, ja levyjä inkuboitiin 37ºC: ssa 24-48 tuntia.
bakteerien tunnistaminen. Kliiniset näytteet, jotka oli saatu iholta verisuonikatetrin kärjen insertiokohdasta, tunnistettiin klassisin menetelmin, ja ne erotettiin aluksi Gramnegatiivisiksi ja Grampositiivisiksi basilleiksi, Grampositiivisiksi cocci-ja hiivasieniksi ja sen jälkeen niiden morfologisten/värjäysominaisuuksien perusteella. Grampositiivisille cocci-bakteereille tehtiin täydentäviä testejä: oksidaasi, katalaasi, NaCl: n kasvu, koagulaasi, mannitolikäyminen ja DNaasi S. aureuksen, koagulaasinegatiivisten Staphylococcus (CoNS)-bakteerien ja muiden grampositiivisten coccien tunnistamiseksi. Veriviljelmät saatiin HC-UFU: n mikrobiologian laboratoriosta.
Mikrobilääkeherkkyystestit
Levydiffuusioagaritekniikka. Näytteitä viljeltiin TSB-elatusaineessa 37ºC: ssa 24 tunnin ajan, minkä jälkeen ne laimennettiin suolaliuoksella, kunnes Suspension sameus vastasi Macfarlandin asteikon 0, 5 putkea (1-2, 108 PMY/mL). The following antimicrobial discs were used: amoxacillin-clavulanate, rifampin, clindamycin, cephalothin, tetracycline, sulfametoxazole-trimethoprim, ampicillin, ciprofloxacin, gentamicin, vancomycin, chloramphenicol, erythromycin, quinupristin-dalfopristin, linezolide, and oxacillin. A standard sample of S. aureus ATCC 25923 was used as a control for the susceptibility test.
CR-BSI definition. Catheter-related bloodstream infection (CR-BSI) were defined as isolation of the same microorganism (i.e. sama laji ja resistenssi) puolikvantitatiivisesta tai kvantitatiivisesta katetriviljelmästä ja potilaan verestä (mieluiten ääreislaskimosta), jolla on siihen liittyviä kliinisiä oireita eikä muuta infektiolähdettä.
tilastollinen analyysi
infektion riskitekijöiden ja mikrobiologisten tulosten tilastollinen analyysi tehtiin soveltamalla prosentuaalisten arvojen (kvalitatiiviset muuttujat) ja Fisherin eksaktia testiä, kun n oli yhtä suuri tai pienempi kuin viisi. Riskitekijöitä ja mikrobiologisia tuloksia verrattiin yksilöllisesti muuttuvaan vasteeseen (univariate analysis), jossa oli kaksi kertaa kaksi vikatapahtumataulukkoa. Monimuuttuja-analyysia logistisen regressiomallin avulla käytettiin muuttujille, joilla oli suuret kertoimet. Keskiarvojen vertailuun käytettiin opiskelijan t-testiä (kvantitatiiviset muuttujat). Tilastollinen merkitsevyys määriteltiin alle 0,05: n p-arvoksi. Muuttujien analysointi tehtiin tilastoohjelmistolla SPSS PC version 11.0 (SPSS, Chicago) ja Epi Info Software version 2000 (CDC Atlanta).
tulokset
niistä 198 potilaasta, joilla oli kaulalaskimoon (n=84) tai alilaskimoon (n=114) asetettu keskeinen verisuonikatetri, 19 potilasta poistettiin epidemiologisesta analyysista, koska katetrin kärjet eivät palautuneet, ne poistettiin toiseen yksikköön tai sairaalasta, mikä vähensi tutkimuksen 179 potilaaseen. Neljä S. aureuksen aiheuttamaa CR-BSIs: ää havaittiin, kaksi muuta MRSA: n aiheuttamaa. S. aureuksen aiheuttama CR-BSI-esiintyvyys oli 4, 9 jaksoa 1 000 päivää / katetri ja CVCs-kolonisaatio oli 21, 2%.
katetrin kärjen kolonisaation riskitekijöiden analyysi on esitetty taulukossa 1. Tähän kontaminaatioon liittyvien riskitekijöiden monimuuttujainen logistinen regressioanalyysi osoitti seuraavaa: kolonisaatio CVC: n insertiokohdassa > 200 PMY/20 cm2 iho, internointi >14 päivää, katetrointi >7 päivää ja eryteema (taulukko 2).
riskitekijät, jotka liittyvät merkittävästi CR-tase-eriin: insertiokohta mukana: > 200 PMY/20 cm2, > 102 PMY CVC: n kärkiosassa, jossa on multilumeninen katetri (Taulukko 3). Multivariaattianalyysin perusteella ainoastaan insertiokohdan bakteerit (P = 0, 03; tai = 6, 89; luottamusväli (CI) = 2, 42-21, 90) ja kärjen bakteerit (p = 0, 01; tai = 7, 95; CI = 1, 95-19, 60) olivat riippumattomia tekijöitä CR-BSI: lle (Taulukko 4).
mikro-organismit useimmin SI: ssä, PC: ssä ja veressä on lueteltu kuvassa 1. Yleisimpiä SI-ryhmässä olivat koagulaasinegatiiviset stafylokokki (49, 7%) ja S. aureus (31, 2%) ja seuraavaksi enterokokki (6, 4%). Katetrin kärjen mikrobiologisessa analyysissä havaittiin pääasiassa koagulaasinegatiivista Staphylococcus-bakteeria (60, 5%) ja S. aureus-bakteeria (28, 9%) ja sen jälkeen Gramnegatiivista basillia (BGN) (7, 9%). S. aureus-isolaattien esiintymistiheys veressä oli suurempi kuin koagulaasinegatiivisilla Stafylokokeilla (41, 4% ja 37, 9%), joita seurasivat BGN (17, 2%) ja enterokokki (3, 5%). Sata kolmekymmentäyhdeksän näytettä S. aureus eristettiin näillä potilailla, joista 57 (41, 0%) oli MRSA: ta ja 82 (59, 0%) MSA: ta. Fenotyyppi MRSA oli vastuussa 37, 1%: sta ja 36, 4%: sta pesäkkeistä insertiokohdassa ja katetrin kärjessä, ja niiden osuus oli 50% S. aureuksen aiheuttamasta basis: sta.
MRSA-isolaateista moniresistenssi oli yleisin, ja samanaikaisesti resistenssi klindamysiinille, kloramfenikolille, erytromysiinille, gentamysiinille, rifampisiinille, sulfametoksatsolitrimetopriimille ja tetrasykliinille. MSSA-näytteissä resistenssi ampisilliinille, erytromysiinille ja siprofloksasiinille oli yleisempi. Kaikki S. aureuksen (MRSA/MSSA) näytteet olivat alttiita dalfopristiinille/kinupristiinille ja linetsolidille sekä vankomysiinille (Taulukko 5).
Keskustelu
CR-BSI: n esiintyvyys vaihtelee huomattavasti katetrityypin mukaan, mutta suurin osa (90, 0%) liittyy lyhytkestoisten, tunnelittomien CVC: iden käyttöön , jotka on laitettu sisäiseen kaulalaskimoon ja alilaskimoon, jotka ovat analysoimiamme laskimoita. Tase-erien osuus vaihtelee 2,5 prosentista 6 prosenttiin.4% , ja määrä vastaa 2, 4-12, 0 jaksoa 1 000 päivää/CVC . Meillä todettiin 2,2% eli 4,9 jaksot per 1,000 päivää / katetri, potilailla, jotka eivät olleet teho-osastolla (teho).
90-luvulla julkaistut tutkimukset, joissa tutkittiin CVC: tä, jota ei liotettu antimikrobisella antiseptisellä aineella, antoivat näiden katetrien kolonisaationopeuden vaihtelun 23, 6%: sta 52, 2%: iin ICUs-potilailla . Tutkimuksessamme cvcs: n kolonisaatioaste oli pienempi (21,2%).
CR-tase-eriin liittyviä riskitekijöitä on lukuisia; ne voidaan jakaa sisäisiin ja ulkoisiin tekijöihin seuraavin kohokohdin: kirurgiset palvelut, pitkittynyt sairaalahoito, teho-osaston hoito, aktiivinen infektio toisessa kohdassa, alipainoinen keskosena syntynyt lapsi, vaikeudet sydän-ja verisuonisolujen asettamisessa, korkeat APACHE-pisteet, CVC: n asettamiskohta (sisäiset kaulasuonet/reisilaskimot), sidetyyppi, ihon kolonisaatio perikatetrikohdassa, katetroinnin kesto (>7/10 päivää), katetritykin kolonisaatio, muun muassa parenteraalinen ruokinta . Havaitsimme seuraavien riskitekijöiden olevan merkittävästi yhteydessä CR-BSI: SI kolonisaatio > 200 PMY/20 cm2 ja > 103 PMY katetrin kärjessä.
tutkimukset ovat osoittaneet, että tärkeä PC-ja cannon-kolonisaatioon liittyvä riskitekijä on perikatheterin ihon alueen kolonisaatio . Tämä kolonisaatio osoittautui itsenäiseksi riskiksi tekijä PC kolonisaatiolle tutkimuksessamme, samoin internointiaika oli suurempi tai yhtä suuri kuin 14 päivää ja katetrointi yli seitsemän päivää.
alle kahdeksan päivää kestävissä CVC: issä katetrin kolonisaatio on yleisemmin (75-90%) seurausta ihon mikro-organismien siirtymisestä verisuonen sisällä olevaan katetrin kärkeen . Kolonisaatio insertiokohdassa 6, 5-56, 5 aiheuttaa suhteellisen riskin (RR) CR-tase-erille . Tämä havainto viittaa siihen, että tähän kohtaan levitettävät siteet voivat vaikuttaa huomattavasti näiden infektioiden ilmaantuvuuteen . Useimmissa HC-UFU: n sairastuvissa ja yksiköissä ei käytetä usein okklusiivista sidontaa tässä invasiivisessa menettelyssä. Vain 16 potilasta (8.9%) oli okklusiivisia siteitä ja 87, 5%: lla heistä <200 PMY/20 cm2 perikatheter-iholla.
suurin osa CR-BSI: n sisältämistä mikro-organismeista kuuluu normaaliin ihon mikrobistoon. Grampositiiviset cocci-yhdisteet aiheuttavat vähintään kaksi kolmasosaa näistä infektioista . Koagulaasi-negatiivinen Staphylococcus (Staphylococcus epidermidis) on yleisin aine, jonka jälkeen S. aureus, Enterococcus spp., Gramnegatiiviset basillit ja hiivasienet . Kuitenkin tutkimuksessamme S. aureus oli yleisin patogeeni (38%), ohittaen miinukset (34,0% ja BGN (24,0%).
vuonna 2002 julkaistussa katsauksessa 90-luvulla tehdyistä prospektiivisista tutkimuksista haittapuolet olivat useimmin eristettyjä mikro-organismeja katetrin kärjessä, jotka erosivat verestä, jossa S. aureus oli yleisin. Tuoreemmat tutkimukset vahvistavat nämä havainnot . Tutkimuksessamme Konnat usein asuttivat kärki oli (60%), kun taas S. aureus löytyi 30%; veressä näimme suurempi osuus S. aureus (38%). Myös muut tutkijat raportoivat S. aureuksen yleisyydestä verrattuna haittoihin veressä .
CR-BSI: n mikrobiologinen diagnoosi on erittäin tärkeä, koska sen hoito vaihtelee eristetyn aineen ja sen resistenssispektrin mukaan. Miinukset johtavat alhaisempaan kuolleisuuteen kuin S. aureus, BGN ja Candida spp..
toinen tärkeä näkökohta näissä infektioissa on resistenssi mikrobilääkkeille, sillä monet CR-BSI-aineet ovat resistenttejä rutiininomaisesti käytetyille mikrobilääkkeille. Oksasilliinille vastustuskykyiset haitat ja S. aureus-infektiot lisääntyvät erityisesti tertiäärisissä ja / tai koulusairaaloissa; niiden osuus eräissä Brasilian sairaaloissa olevista isolaateista on yli 30 prosenttia, Pohjois-Amerikan sairaaloissa 34 prosenttia ja Euroopan maissa noin 1,8-54,0 prosenttia . CS-näytteistä penisilliinille vastustuskykyisiä isolaatteja on jopa 85,5 prosenttia. Aiemmassa HC-UFU: ssa tehdyssä tutkimuksessa löysimme 44% oksasilliinille resistenttien näytteiden esiintymistiheyden S. aureus-isolaateista, mikä vastaa 41,0%: A , jonka olemme nyt löytäneet.
MSRA-isolaatit ovat yleensä resistenttejä useille antibiooteille, mukaan lukien betalaktamiikka, aminoglukosidit, makrolidit, fluorokinolonit, kloramfenikoli, mupirosiini ja muut; vankomysiini on lääke, joka on valittu näiden mikro-organismien vakavien infektioiden hoitoon . Äskettäin kaksi uutta lääkettä, dalfopristiini/kinopristiini ja linetsolidi, ilmestyivät vaihtoehtoina MRSA: n aiheuttamien infektioiden hoitoon . Tutkimuksessamme löysimme MRSA-isolaateista oksasilliiniresistenssin yhteyden, joka osoittaa alttiutta vankomysiinille, dalfopristiinille / kinopristiinille ja linetsolidille.
CVC: n kärjen stafylokokit ja sitä seuraavat CR-BSI-tartuntareitit ovat ekstraluminaalisia lyhytkestoisten (<8 päivää) ja intraluminaalisia pitkäkestoisten (>8 päivää) infektioiden yhteydessä; kriittisesti sairaiden potilaiden verenkierto on todennäköisin reitti, kuten aiemmin on kuvattu . Tutkimuksessamme mikro-organismien esiintyminen CVC-insertiokohdassa oli itsenäinen riskitekijä, joka liittyy CVC-kolonisaatioon, mikä osoittaa ihon merkityksen tämän mikro-organismin varastona CVC-tip-kolonisaatiossa. CR-BSI-patogeneesissä, kun taas S. epidermidis ja muut haitat yleensä kiinnittyvät CVC-polymeerin pintaan muodostamaan limaa / glykokalyx sen jälkeen, kun katetri on asetettu verisuonijärjestelmään, S. aureuksessa hyökkäyksen päämekanismi välittyy proteiinien adhesiineilla bakteerin soluseinässä, johon liittyy fibrinogeenisia reseptoreita ja fibronektiinia CVC-kärjen biofilmissä .
S. aureuksen aiheuttaman CR-BSIs: n patogeneesissä tämän mikro-organismin aiheuttaman nenän kontaminaation merkitys on hyvin osoitettu . Sesso ym. osoitti, että nenän dekolonisaatio vähentää perikatetrin kolonisaation riskiä kahdeksankertaisesti ja CR-BSI nelinkertaisesti. S. aureuksen aiheuttamaa nenäkolonisaatiota tutkimukseemme osallistuneilla potilailla ei arvioitu altistavaksi tekijäksi tälle infektiolle, mutta >200 PMY/20 cm2 CVC: n insertiokohdassa oli itsenäinen CR-BSI: n riskitekijä (tai=6, 89). CVC-kärjen bakteerikuorma liittyy CVC-viljelmäpositiivisuuteen ja bakteerien löytymiseen veriviljelystä ja siten CR-BSI: hen . Tutkimuksessamme tarkasteltiin vain S. aureus, > 102 PMY katetrin kärjen kolonisaatio oli merkittävä tekijä (tai = 7, 85) useiden logististen regressioanalyysien perusteella.
mahdollinen riski olla käyttämättä okklusiivisia siteitä CVCs: n rutiinihoidossa, jonka löysimme usein tutkimuksessamme, vaikuttaa myös CVC: n insertiokohdan kolonisaatiotasoihin; se liittyy S. aureuksen kolonisaatioon katetrin kärjessä, joka on tärkeä tekijä primaaristen bakteremioiden patogeneesissä.
1. Raad I. Intravaskulaarikatetriin liittyvät infektiot. The Lancet 1998; 351: 893-8.
2. Mermel L.A. Prevention of intravaskulaarinen katetri-related infections, Annals Internal Medicine 2000;132: 391-402.
3. Pitet D., Tarara D., Wenzel, R. Nosocomial bloodship infection in critically ill patients: excess length of saty, extra costs, and atributable mortality. Journal American Medical Association 1993; 271: 1598-1601.
4. Digiovine B., Chenoweth C., Watts C., Higgins M. The atmributable mortality and costs of primary nosocomial bloodstream infections in intensive care unit. American Journal of Respiratory Critical Care Medicine 1999; 160: 976-81.
5. Fratino G., Mazzola C., Buffa P., et al. Mekaaniset komplikaatiot liittyvät indwelling keskuslaskimokatetrin pediatric hematology/oncology potilailla. Pediatric Hematology and Oncology 2001; 18: 317-24.
6. Maki D. G.-infektiot, jotka johtuvat infuusiohoidosta. Julkaisussa: Bennett J. V., Brachman P. S. Hospital Infections. Boston, MA: Little Brown and Co. 1998;689-724.
7. Crump J. A., Collignom P. J. Intravaskulaarikatetriin liittyvät infektiot. European Journal Clinical of Infectious Diseases 2000; 19: 1-8.
8. National Nosocomial Infections Surveillance (nnis) System Report, Data Summary from January 1992-June 2001, julkaistu elokuussa 2001. American Journal Infection Control 2000; 29: 404-21.
9. Maki D. G.,Ringer M., Alvarado C. J. prospektiivinen satunnaistettu tutkimus povidiinijodista, alkoholista ja kloreksidiinista keskuslaskimo-ja valtimokatetriin liittyvien infektioiden ehkäisemiseksi. Lancet 1991; 338: 339-43.
10. Brun-Buisson C., Abrouk F., Legrand P., et al. Keskuslaskimokatetriin liittyvän sepsiksen diagnoosi: kvantitatiivisten kärkiviljelmien kriittinen taso. Arkisto Sisätaudit 1987;147:873-7.
11. National Committee For Clinical Laboratory Standards. Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests, v. 17, 1997.
12. Kluger D., Maki D. the relative risk of intravaskular device-related bloodstream infections with different types of intravaskular devices in adults: a meta-analysis of 206 published studies. Infektio Control Hospital Epidemiology 2000; 21: 95-6.
13. Bach A., Schmidt H., Bottiger B., Vogel B. antibakteerisen aktiivisuuden säilyttäminen ja antiseptisesti sidottujen keskuslaskimokatetrien bakteerien kolonisaatio. Journal Antimicrobial Chemotherapy 1996;37: 315-22.
14. Tennenberg S., Lieser M., Mccurdy B., et al. Prospektiivinen satunnaistettu tutkimus antibiooteilla ja antiseptisellä aineella päällystetystä keskuslaskimokatetrista katetriin liittyvien infektioiden ehkäisyssä. Archives Surgery 1997;132: 1348-51.
15. Heard S. O., Wagle M., Vijayakumar E. vaikutus triple-lumen keskuslaskimokatetrien päällystetty klooriheksidiini ja hopea sulfadiatsiini esiintyvyys katetriin liittyvän bakteremia. Archives Internal Medicine 1998;158: 81-8.
16. Hannan M., Juste R. N., Umasanker S. Antiseptisesti sidotut keskuslaskimokatetrit ja bakteerien kolonisaatio. Anaesthesia 1999; 54: 868-72.
17. Barsic B., Beus I., Marton E., et al. Nosocomial infections in critically ill infectious disease patients: results of a 7-year focal surveillance. Infektio 1999; 27: 16-22.
18. Wallace W. C., Cinat M., Gornick W. B., et al. Sairaalainfektiot kirurgisessa Teho-osastossa: trauman ja leikkauspotilaiden välinen ero. American Surgeon 1999;.65:987-90.
19. Eggimann P., Harbarth S., Constantin M. N., et al. Verisuonihoitoon kohdennetun ehkäisystrategian vaikutus tehohoidossa hankittujen infektioiden esiintyvyyteen. Lancet 2000; 355: 1864-8.
20. Finkelstein R., Rabino G., Kassis I., Mahamid I. Device-associated, device-day infection rates in an Israel adult general intensive care unit. Journal Hospital Infection 2000; 44: 200-5.
21. Richards M. J., Edwards J. R., Culver D. H., Gaynes R. P. Nosocomial infections in combined medical-surgical intensive care units in the United States. Infektio Control Hospital Epidemiology 2000; 21: 510-5.
22. Sheretz J. R. Verisuonten katetritulehduksen patogeneesi, s. 111-125. Teoksessa F. A. Waldvogel, A. L. Bisno (toim. Infektiot, jotka liittyvät vaativiin lääkinnällisiin laitteisiin. 3.toim. ASM Press, Washington, D. C. 2000.
23. Loo S., Van Heerden P. V., Gollege C. L., et al. Infektio keskuslinjoissa: antisepticimpregnated vs. standardikyllästämättömät katetrit. Anaestesia Intensive Care 1997;25: 637-9.
24. Maki D. G., Stolz S. M., Wheeler S., Mermel L. A. keskuslaskimokatetriin liittyvän verenkiertoinfektion ehkäisy antiseptisellä kyllästetyllä katetrilla. Satunnaistettu, kontrolloitu koe. Annals Internal Medicine 1997;127: 257-66.
25. Marik P. E., Abraham G., Careau P., et al. Kahden antimikrobisen keskuslaskimokatetrin ex vivo antimikrobinen aktiivisuus ja kolonisaationopeus. Critical Care Medicine 1999; 27: 1128-31.
26. Safdar N., Kluger D. M., Maki D. G. a review of risk actors for CR-BSI caused by percytaveaously inserted, noncuffed central laskimokatetra. Medicine 2002; 81: 466-79.
27. Egebo K., Toft P., Jakobsen C. J. Contamination of central Venus catimeters. Ihon sisäänpanokohdan haava on merkittävä saastumisen lähde. Journal Hospital Infection 1996;32: 99-104.
28. Mahieu L. M., Dedooy J. J., Muynck A. O. ym. Mikrobiologia na drisk factors for katetri exit-ste and-hub colonization in neonatal intensive care unit patients. Infection control Hospital Epidemiology 2001; 22: 357-62.
29. Engervall P., Ringertz S., Hagman E., et al. Hematologisia maligniteetteja sairastavilla potilailla keskuslaskimokatetrisidosten vaihto kahdesti viikossa on parempi kuin kerran viikossa. Journal Hospital Infection 1995; 29: 275-86.
30. Nikoletti S., Leslie G., Gandossi S., et al. Prospektiivinen, satunnaistettu, kontrolloitu tutkimus, jossa verrattiin läpinäkyviä polyuretaani-ja hydrokolloidisidoksia keskuslaskimokatetreille. American Journal Infection Control 1999; 27: 488-96.
31. Curchoe R. M., Powers J., El-Daher N. Weekly transparent dressing changes related to increased bakteremia rates. Infektio Control Hospital Epidemiology 2002; 23: 730-2.
32. Darouiche R. O., Raad I. I., Heard S. O., Mayhall G. kahden antimikrobisen kyllästetyn keskuslaskimokatetrin vertailu. New England Journal Medicine 1999; 340: 1-8.
33. Centers For Disease Control And Prevention. Staphylococcus aureus resistentti vankomysiinille-meille. MMWR 2000;48: 1165-7.
34. Raad I. I., Hanna H. A. Intravaskulaarikatetriin liittyvät infektiot. Archives Internal Medicine 2002;162: 871-8.
35. Dobbins B. M., Kite P., Kindon A., et al. DNA-sormenjälkianalyysi koagulaasinegatiivisista stafylokokeista, jotka liittyvät katetriin liittyviin verenkiertoon liittyviin infektioihin. Journal Clinical Pathology 2000; 55: 824-8.
36. Bantar C., Bustos J. L., Vesco E., Morera G. Keskuslaskimokatetriin liittyvä infektio: Prospektiivinen, havainnoiva tutkimus, jossa arvioitiin esiintymistiheyttä eräässä opetussairaalassa Argentiinassa. Infection Control Hospital Epidemiology 2002; 23: 757-8.
37. Richards B., Chaboyer W., Bladen T., Schluter P. J. Effect of central venous catetry type on infections: a prospective clinical trial. Journal Hospital Infection 2003; 54: 10-7.
38. Öncü S., Özsüt H., Yldirim Y., et al. Keskuslaskimokatetriin liittyvät infektiot: riskitekijät ja glykopeptidiantibioottien vaikutus. Annals of Clinical Microbiology and Antimicrobials 2003;2: 1-6.
39. Valles J., Leon C., Alvarez-Lerma F. Nosocomial bakteremia in critically ill patients: a multicenter study evaluating epidemiology and prognosis. Spanish Collaborative Group for Infections in Intensive Care Units of Sociedad Espanola de Medicina Intensiva y Unidades Coronarias (SEMIUC). Clinical Infectiuos Diseases 1997;24: 387-95.
40. Rello J. Evaluation of outcome of intravenous catetry-related infections in critically ill patients. Am J Respir Crit Care Méd 2000; 162: 1027-30.
41. Moreira M., Medeiros E. A. S., Pignatari A. C. C., et al. Oksasilliiniresistentin Staphylococcus aureuksen aiheuttaman sairaalaverenkiertoinfektion vaikutus kuolleisuuteen ja sairaalahoitoon. Revista Associação Médica Brasileira 1998; 44: 263-8.
42. Diekema D. J., Pfaller M. A., Jones R. N., et al. Survey of infections due to Staphylococcus species: frequency of occurrence and antimicrobial susceptibility of isolates collected in the United States, Canada, Latin America, Europe, and the Western Pacific Region for the SENTRY antimicrobial Surveillance Program, 1997-1999. Kliiniset Tartuntataudit 2001; 02: S114-32.
43. Frebourg N. B., Cauliez B., Lemeland J. F. Evidence for nasal carriage of methicillin-resistent Staphylococcus colonizing intravaskulaarinen devices. Journal of Clinical Microbiology 1999;37: 1182-5.
44. Sadoyama G., Gontijo Filho P. P. riskitekijät metisilliiniresistentille ja herkälle Staphylococcus aureukselle Brasilian yliopistollisessa sairaalassa. Braz J Infect Dis 2000; 4:135-43.
45. Chambers H. F. Methicillin Resistance in Staphylococcus: Molecular and Biochemical Basis and Clinical Implications. Clinical Microbiology Reviews 1997;10: 781-91.
46. Bhavnani S. M., Ballow C.H. uudet aineet grampositiivisille bakteereille. Current Opinion in Microbiology 2000; 03: 528-34.
47. Crnich C. J., Maki D. G. lupaus uudenlaisesta teknologiasta intravaskulaarisen laitteen liittyvän verivirtaininfektion ehkäisemiseksi. Patogeneesi ja lyhytaikaiset laitteet. Clinical Infectious Diseases 2002; 34: 1232-42.
48. Eiff C. V., Peters G., Heilmann C. koagulaasinegatiivisten stafylokokkien aiheuttamien infektioiden patogeneesi. Lancet Infectious Diseases 2002;02: 677-85.
49. Kluytmans J., Belkum A. V., Verbrugh H. Nasal Carriage of Staphylococcus aureus: Epidemiologia, taustalla olevat mekanismit ja niihin liittyvät riskit. Clinical microbiology reviews 1997;10: 505-20.
50. Livesly M. A., Tebbs S. E., Moss M. A., et al. Käytä pulssikenttägeeliä eletroforeesi keskuslaskimokatetrien mikrobikontaminaation lähteen määrittämiseksi. European Journal Clinical Infectious Diseases 1998;17: 108-12.
51. Sesso R., Barbosa D., Leme I. L., et al. Staphylococcus aureus profylaksia hemodialyysipotilailla keskuslaskimokatetrien aikana: mupirosiinivoiteen vaikutus. Journal Medical Society Neprhology 1998; 09: 1085-92.
52. Rijnders B. J. A., Wijngaerden E. V., Peetermans W. E. katetrin kärki kolonisaatio korvikkeena päätepisteen kliiniset tutkimukset katetriin liittyvä verenkiertoon infektio: kuinka vahva on näyttöä? Clinical Infectious Diseases 2002; 35: 1053-8.
Address for correspondence:
Dr. Geraldo Sadoyama
area of immunology, microbiology and Parasitology, Microbiology Laboratory
block 4C, Umuarama Campus, Universidade Federal de Uberlândia, Uberlândia , MG, Brazil. 38400-902
Puhelin: 55 (34) 3218-2236 faksi: 55 (34) 3218-2333
Sähköposti: [email protected] [email protected]
saatu 06.joulukuuta 2005; tarkistettu 22. maaliskuuta 2006.
